实验八 淋巴细胞功能检测
一、特异性CTL功能检测
实验目的
1.熟悉 特异性CTL功能检测的操作及原理。
2.了解 特异性CTL功能检测的临床意义。
基本原理
细胞毒性T细胞(CTL)是T细胞经靶细胞抗原在体内或体外刺激后所产生的一种效应T细胞。当再次与靶细胞抗原接触时,可表现出破坏、溶解靶细胞的特性。这种特性称为淋巴细胞参与的细胞毒性(LMC),测定LMC的方法称为LMC试验。
CTL杀伤相应的靶细胞,可通过形态学检查法和同位素标记法测定其杀伤活性,其中形态学检查法是用显微镜计数残留的靶细胞数,计算淋巴细胞对靶细胞生长的抑制率。本节主要介绍同位素标记法,以51Cr释放试验为例。铬酸钠()中六价铬被活细胞摄取后,可与细胞质内的大分子物质(如蛋白质)结合,使靶细胞被标记。当标记51Cr细胞受到损伤或死亡后,以三价铬的形式被溶解的细胞释放出来。用51Cr标记靶细胞,将靶细胞和活化的CTL混合反应后,通过检测被CTL所杀伤的靶细胞释放到培养上清液中51Cr的放射计数率(cpm)即可判断CTL的杀伤活性。
实验材料
(1)靶细胞(K562细胞)。
(2)效应细胞(诱导产生的CTL),对照效应细胞(未致敏的脾细胞)。
(3)10%FCS-RPMI 1640培养液。
(4)有丝分裂原(1mg/ml ConA,溶于PBS)。
(5)1Mci/ml,溶于等渗缓冲液。
(6)96孔培养板、112μm孔径筛网、微量加样器、5%CO2培养箱、2%TritonX-100、51Cr计数管、小玻璃管、γ计数器等。
实验方法
(1)制备靶细胞
1)收集对数生长期的靶细胞,用10%FCS-RPMI 1640培养液调整细胞浓度为5×107/ml,取1ml室温1200r/min,离心5分钟,弃上清液。
2)轻悬细胞,加1Mci/ml 及10%FCS-RPMI 1640培养液20μl。轻轻混匀,37℃,5%CO2培养箱孵育1~2小时。
3)用10%FCS-RPMI 1640培养液将靶细胞洗2~3次,重悬靶细胞,调整细胞浓度为1×105/ml。
(2)制备效应细胞:淋巴细胞经有丝分裂原刺激培养5天获效应CTL,调整效应细胞浓度为1×106/ml。
(3)96孔培养板每孔加入CTL 100μl,设3个复孔,每孔加靶细胞100μl,1200r/min,离心30秒,以促进效应细胞与靶细胞之间的接触。37℃,5%CO2培养箱孵育3~5小时。另设只含100μl标记靶细胞的空白孔2孔,其中一孔加10%FCSRPMI 1640培养液100μl作为自然释放对照孔,一孔加2%TritonX-100 100μl作为最大自然释放对照孔。
(4)培养结束后,1200r/min,离心5分钟,收集每孔上清液100μl于小玻璃管中,用γ计数器测上清液的cpm值。
实验结果
按下式计算杀伤效应:
备注:实验孔cpm为三孔cpm的均值。
注意事项
(1)靶细胞应为对数生长期细胞,用台盼蓝染色法检测靶细胞的存活率(应> 95%)。标记后的自然释放率应<15%。
(2)51Cr半衰期为28天,标记时总体积应较小(0.05~0.1ml),51Cr标记后的靶细胞应尽快加入效应细胞中。与效应细胞作用时间也不宜过长,因为随时间的延长,死细胞增多,自然释放率也随之增高。
(3)效靶细胞比率一般选择(50~100)∶1。效应细胞与靶细胞在室温下就能很好结合,但靶细胞的裂解必须在37℃。孵育时间与效应细胞的活性和靶细胞自发51Cr释放水平有关,因此应进行预实验加以确定。
(4)使用51Cr溶液或51Cr标记细胞时,应严格遵守同位素操作条例。
(5)51Cr释放法的最大问题是靶细胞在无CTL存在时的51Cr自发释放。通常在3~4小时的实验中,自发释放约为最大释放的5%~30%。自发释放必须小于最大释放的30%,实验才成为可行。减少自发释放的措施包括:①缩短实验时问。②选用敏感的靶细胞,缩短标记时间。③应保证标记细胞最后一次洗涤的游离51Cr最大释放率低于5%。④除进行细胞表面修饰(如标记TNP)外,靶细胞悬液中均应加入外源蛋白,如FCS。⑤对靶细胞的操作要轻柔。
临床意义
本实验是评价机体抗原特异性CTL活性的一个指标,特别是测定肿瘤患者CTL杀伤肿瘤细胞的能力,常作为判断预后和观察疗效的指标之一。也可为肿瘤的免疫治疗提供新的方法和思路。
二、B细胞抗体形成功能检测(溶血空斑试验)
实验目的
1.熟悉 B细胞抗体形成功能检测的操作及原理。
2.了解 B细胞抗体形成功能检测的临床意义。
基本原理
溶血空斑试验又称PFC测定技术,它是在体外检查和计数产生IgM或其他类型Ig的抗体生成细胞的一类试验。通常是用绵羊红细胞经腹腔免疫小鼠,3~5天后取脾脏,制成脾细胞悬液与相应数量的绵羊红细胞(指示细胞)和补体混合,注入载玻片小室内,经37℃培养箱培养后,单个散在抗体生成细胞释放抗体,抗体与周围的绵羊红细胞(抗原)结合,并在补体参与下,使绵羊红细胞溶解,结果在抗体生成细胞周围形成肉眼可见的圆形透明溶血区——溶血空斑。计算空斑数目,即可推算脾脏内存在的抗体生成细胞的总数。本试验可作为判断机体体液免疫状态的指标,研究免疫增强和抑制药物对机体免疫功能的影响等特异性指标。具有特异性高,筛检力强,可直接观察等特点。PFC测定技术目前所用的方法有:琼脂固相法、单层细胞法、小室液相法。下面介绍小室液相法。
实验材料
(1)解剖器械包括眼科剪,眼科镊,平皿,100目不锈钢网,小玻璃漏斗,100目尼龙布。
(2)试管,吸管。
(3)载玻片(双面胶条制成小室)。
(4)石蜡盘,酒精灯。
(5)微量移液器及塑料头。
(6)小鼠。
(7)5%和15%绵羊红细胞(SRBC)悬液,新鲜豚鼠血清,Hank's液(含5%新生小牛血清)。
实验方法
1.免疫小鼠及脾细胞悬液的制备 用5%SRBC悬液0.4ml(约4×108个)注射于小鼠腹腔,4天后拉脱颈椎处死,取出小鼠脾脏放在已加入5ml Hank's液的平皿中,用100目不锈钢网研磨后,经100目尼龙布过滤放入试管中,1000r/min,离心5分钟,洗2次,将沉淀的脾细胞重悬于4ml Hank's液中,细胞计数,配成1×107/ml细胞浓度的脾细胞悬液。
2.补体制备 新鲜豚鼠血清,在4℃冰箱内与绵羊红细胞混合30分钟,然后重新分离获取血清,用Hank's液配成1∶(2~4)。
3.15% SRBC悬液 取SRBC,用生理盐水洗3次(每次1500r/min,离心10分钟),最后一次以2500r/min离心15分钟,取SRBC配成15% SRBC悬液。
4.载玻片小室的制作 取洁净(无油)的载玻片,按下图(图1-8-1)粘三条透明胶带,在胶带上薄涂一层凡士林(勿涂到小室内),然后用镊子取两个盖片,分别放在其上,制成两个小室。用镊子尾端将盖片压平贴牢(保持小室一定体积)。用凡士林将盖片底端(其中的任一端)封住,顶端注入细胞混合液。
图1-8-1 载玻片小室示意图
5.加样
1×107/ml脾细胞悬液 0.2ml
15% SRBC 0.2ml
补体〔1∶(2~4)稀释〕 0.2ml
Hank's液 1ml
混匀,用100μl的微量加样器吸取被检细胞悬液,于小室开口一端轻轻将液体注满小室(勿使气泡产生,勿使液体外溢),记录实际注入的细胞悬液微升数(约70μl),每个样品注2个小室,取其平均值。然后以凡士林或石蜡封口,放于37℃培养箱内1~1.5小时,取出观察结果。
实验结果
(1)肉眼观察空斑,计数1个小室出现的溶血空斑数。对模糊不清的空斑,可放在低倍镜下观察。真正的溶血空斑,中心有1个淋巴细胞,周围为透明区。
(2)计算全脾中抗体产生细胞数。
全脾中抗体产生细胞数可按照下述公式计算:
抗体产生细胞数=脾细胞悬液总毫升数/注入小室内的脾细胞毫升数×标本空斑数
注意事项
(1)小室注入液体不能留有气泡。
(2)小室边缘须用凡士林、石蜡封严。
(3)放于37℃温箱培养时必须放平,不可倾斜。
三、NK细胞活性测定
实验目的
1.熟悉 NK细胞活性测定的操作及原理。
2.了解 NK细胞活性测定的临床意义。
基本原理
NK细胞即自然杀伤细胞,是一类能非特异地杀伤肿瘤细胞、病毒的细胞,甚至能杀伤某些正常细胞的淋巴样细胞。它无须预先致敏,也不需要抗体的参与。NK细胞在杀伤靶细胞时不受MHC限制,与特异性CTL的识别机制不同。在抗肿瘤、抗病毒感染及免疫调节等方面发挥着重要作用。
本次测定NK细胞的活性是采用非同位素的方法。非同位素的方法有乳酸脱氢酶释放法及台盼蓝染色法,本次实验主要介绍台盼蓝染色法。
实验材料
(1)靶细胞(用K562细胞制备)。
(2)RPMI 1640培养液,按说明配制。
(3)0.5%台盼蓝染液、等渗盐水。
(4)超净台、倒置显微镜、水浴箱、离心机、计数板、小鼠、手术剪和镊子等。
实验方法
(1)制备靶细胞:取传代24小时K562细胞,用RPMI 1640培养液调至所需浓度。
(2)制备效应细胞:拉颈处死小鼠,无菌取脾脏,用镊子捣碎,悬于2ml培养液中,静置5分钟,取无沉渣液,或直接用纱布过滤,1500r/min离心10分钟,弃上清液,用3ml无菌蒸馏水崩解红细胞,40秒后用等渗盐水恢复等渗,2000r/min离心10分钟,弃等渗盐水,用等渗液调至所需浓度。
(3)取效应细胞和靶细胞各100μl,加入试管中(一般效靶比为50∶1或100∶1以上),用RPMI 1640培养液补至1ml,此为试验试管;另设对照试管(仅有效应细胞和PBS或靶细胞和PBS)置37℃水浴2小时。加1滴0.5%台盼蓝染液染色,立即观察结果。
实验结果
(1)死细胞呈蓝色,肿胀变大,失去光泽性。
(2)NK细胞杀伤百分率。
镜下计数200个靶细胞,求出死细胞百分率:
注意事项
(1)需用状态良好的靶细胞,一般传代时间超过两个月的K562细胞应弃去,再重新复苏。
(2)效靶细胞混合要充分。
(3)实验中必须设置对照管。
(4)效靶比例要适当,避免出现假阳性。
(5)实验所用台盼蓝浓度不能过高,染色时间不宜过长,以防造成细胞死亡,影响实验的精确性。